文章信息
- 李世军, 刘英, 王月, 马青, 黄艳, 周敬祝, 余春, 田克诚, 邹志霆, 唐光鹏, 王定明. 2014.
- Li Shijun, Liu Ying, Wang Yue, Ma Qing, Huang Yan, Zhou Jingzhu, Yu Chun, Tian Kecheng, Zou Zhiting, Tang Guangpeng, Wang Dingming. 2014.
- 贵州省2010-2012年6株羊种布鲁氏菌分子流行病学特征研究
- Study on the epidemiologic characteristic of Brucella melitensis isolated in Guizhou province in 2010-2012
- 中华流行病学杂志, 2014, 35(10): 1138-1141
- Chinese Journal of Epidemiology, 2014, 35(10): 1138-1141
- http://dx.doi.org/10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2014.10.014
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文章历史
- 投稿日期:2014-6-4
布鲁氏菌病(Brucellosis)(布病)是由布鲁氏菌 属(Brucella)侵入机体引起世界性、多宿主感染的人 兽共患病[1]。贵州省分别于2010和2011年首次从患 病动物(山羊)和患者分离出羊种布鲁氏菌,从病原 学角度证实贵州省人和动物中存在布病感染[2, 3]。本 研究以贵州省布鲁氏菌分离株为研究对象,采用布 鲁氏菌属外膜蛋白31基因PCR(BCSP31-PCR)和 基于插入序列IS711的牛、羊、绵羊附睾和猪种布鲁 氏菌特异的PCR(AMOS-PCR)技术鉴定其属和种 (型),应用基于16个可变数量串联重复序列(VNTR)的多位点可变数目重复序列分析(MLVA-16)技术分析贵州省人和动物来源布鲁氏 菌的分子流行特征。 材料与方法
1. 试剂:布鲁氏菌培养基采用进口布鲁氏菌肉 汤(批号为211088)和琼脂(批号为211086)成品培 养基(均购自美国BD公司),按照说明书配制。布 鲁氏菌阳性血清、单项特异性血清(A、M和R)、特异 噬菌体(Tb、BK-2、Wb、Fi)均由中国疾病预防控制 中心传染病预防控制所布病室提供。PCR引物由宝 生物工程(大连)有限公司合成。PCR相关试剂购于 宝生物工程(大连)有限公司。
2. 菌株:实验菌株为分离自贵州省2010-2012 年患者与动物(山羊)血液,并经传统方法鉴定为羊 种生物3型布鲁氏菌菌株(命名为ZY、ZA、SQ、LL3、 LL4和LL11),其中菌株ZY来源于铜仁市德江县患 者,菌株ZY和ZA来源于遵义市和正安县患者,SQ 来源于石阡县患者。LL3、LL4和LL11为黔南市龙 里县动物(山羊)疫情来源菌株。阳性对照菌株为布 鲁氏菌疫苗株A19(牛种)、M5(羊种)和S2(猪种) (购自兰州生物制品研究所有限责任公司)。
3. DNA提取:挑取布鲁氏菌可疑菌落接种于布 鲁氏菌琼脂平板,培养48h后采用水煮法提取细菌 核酸。 4. BCSP31-PCR法鉴定布鲁氏菌属:采用布鲁 氏菌属特异性基因BCSP31作为定属基因,按照文献 [2, 3]提供的B4和B5引物序列和参数进行布鲁氏 菌属的鉴定。
5. AMOS-PCR 法鉴定布鲁氏菌种/型:采用参考 文献[3, 4]提供的以布鲁氏菌属IS711插入序列为 基础建立的AMOS-PCR引物及参数进行布鲁氏菌 种/型的鉴定。
6. MLVA-16分析:采用参考文献[5, 6]提供的 方法进行,采用Bio-Numerics4.0软件将本次所测菌 株的MLVA-16各位点数据与文献报道[5]的我国其 他省份的105株羊种布鲁氏菌菌株的MLVA-16数 据进行聚类分析。 结 果
1. BCSP31-PCR鉴定:BCSP31-PCR方法对分 离株和对照菌株核酸进行扩增,产物采用1.5%琼脂 糖电泳进行检测,结果显示,分离株及阳性对照菌株 核酸均扩增出布鲁氏菌属特异的223bp的条带,而 阴性对照无条带出现(图 1)。
注:M:相对分子质量标准;1:ZY株;2:ZA株;3:SQ株; 4:LL3株;5:LL4株;6:LL11株;7:疫苗株A19;8:疫苗株M5;9: 疫苗株S2;10:阴性对照 |
2. AMSO-PCR检测:AMOS-PCR方法对分离株 和对照菌株核酸进行扩增,产物采用1.5%琼脂糖电 泳检测。结果显示,分离株及阳性对照菌株核酸均 扩增出羊种布鲁氏菌特异的731bp条带,而阴性对 照无条带出现(图 2)。
注:同图 1 |
3. MLVA-16分 析:采 用MLVA-16的16个 VNTR位点引物序列对菌株核酸进行PCR扩增,然 后采用2.0%琼脂糖凝胶电泳均出现清晰条带,扩增 产物测序拼接后在测序序列上标记出引物序列的位 置并去除多余序列后获得各位点的序列长度,根据 重复单元长度计算出Bruce06、08、11、12、42、43、45、 55、04、07、09、16、18、19、21和30位点的重复数目 (图 3)。16个位点的重复数目显示,6株贵州省布鲁氏菌在VNTR位点Bruce06、08、11、12、43、45、55、18 和21上的重复数目完全相同,VNTR位点Bruce42、 04、07、09、16、19和30上存在重复数目差异(图 3)。 6株分离株中菌株ZY与ZA,菌株LL3、LL4和LL11 各位点的重复数目分别完全相同。6株菌与来自我 国其他省份的105株羊种布鲁氏菌被分为72个MT 型,其中菌株ZY和ZA为MT63型,菌株LL3、LL4 和LL11为MT67型,菌株SQ为MT72型(图 3)。将 各位点重复数目与来自我国其他省份105株羊种布 鲁氏菌的MLVA-16数据进行聚类分析,结果显示, 2010年分离自山羊的菌株LL3、LL4和LL11,ZY与 ZA分别聚类最近,相似性分别为100%。菌株SQ与 贵州省其余5株菌相对较远,相似性在60%左右。 贵州省分离菌株LL3、LL4和LL11,ZY与ZA与云 南、广东和福建省的羊种生物3型布鲁氏菌聚类较 近,菌株SQ与其他菌株聚类关系相对较远(图 3)。
注:图中边框标记内容为贵州省分离菌株信息 |
贵州省分别于2010和2011年首次从患病动物 (羊)和患者分离出羊种布鲁氏菌[2, 7],此后,布病疫 情在贵州省迅速扩散,散发和暴发疫情时有发生,因 此,布病属贵州省新发传染病。本研究将来源于贵 州省患者和动物的6株菌株采用属特异性 BCSP31-PCR和AMOS-PCR进行鉴定,结果显示本 次分离的可疑细菌为羊种布鲁氏菌。本研究中患者 均为农村地区的养羊户,均与羊有直接接触史,提示 羊为贵州省人间布病的主要传染源。
布鲁氏菌MLVA-16技术是基于16个VNTR位 点的分子分型方法,该技术已被应用于布鲁氏菌分 型并了解其遗传与分子流行病学特征[4, 5]。本研究 中MLVA-16技术分析显示,来自贵州省的6株布鲁 氏菌分离株在部分VNTR位点(Bruce42、04、07、09、 16、19和30)存在重复数目差异,来自不同疫情患者 的3株菌中,遵义的ZY株和ZA株16个位点完全相 同,同属一个MLVA型(MT63),而SQ株在VNTR位 点Bruce04、09、19和30与ZY和ZA株具有重复数目 差别,被单独分为1个MLVA型(MT72),而3株来自 同一起动物疫情菌株LL3、LL4和LL11的16个位点 重复数目完全相同,同属一个MLVA型(MT67),提 示贵州省6株羊种生物3型布鲁氏菌基因组具有重 复序列多态性。MLVA-16所揭示的菌株间部分位 点存在重复数目差异可能为不同地域来源菌株之间 存在的遗传变异所致,其差异是否与布鲁氏菌的致 病力有关尚需要进一步研究。
聚类分析结果显示,本次分离菌株与我国羊种 生物3型布鲁氏菌聚类最近,提示6株布鲁氏菌为羊 种生物3型,这与全国布鲁氏菌病原体型别分布一 致[8]。其中2010年分离自山羊的菌株LL3、LL4和 LL11,ZY与ZA分别聚类最近,相似性均为100%。 而菌株SQ与贵州省其余5株菌相对较远,相似性在 60%左右。此外,聚类图显示贵州省分离菌株LL3、 LL4、LL11、ZY和ZA与云南、广东和福建省的羊种 生物3型布鲁氏菌聚类较近,而菌株SQ与其他菌株 聚类关系相对较远,上述结果提示,贵州省布鲁氏菌 病病原体间的相似性和多样性及与我国其他省羊种 布鲁氏菌之间的遗传关系。经流行病学调查,本研 究中的患者均为养羊户,所饲养的羊多数为贵州省 因畜牧业发展需求而从外地引进羊或是来历不明的 山羊,提示贵州省动物间布鲁氏菌感染为输入性传 播,其云南、广东和福建可能为贵州省布病来源地, 抑或贵州省羊种布鲁氏菌流行株与云南、广东和福 建流行株属同一来源菌株。
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