文章信息
- 王小红, 钱艺美, 缪铃, 乐瑶, 杜娟.
- Wang Xiaohong, Qian Yimei, Miao Ling, Le Yao, Du Juan.
- 高危型HPV E6/E7 mRNA与宫颈癌相关性分析
- Correlation between high risk type human papillomavirus E6/E7 mRNA and cervical cancer
- 中华流行病学杂志, 2016, 37(7): 1003-1005
- Chinese Journal of Epidemiology, 2016, 37(7): 1003-1005
- http://dx.doi.org/10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2016.07.019
-
文章历史
- 投稿日期: 2016-01-25
宫颈癌是妇科临床最常见的恶性肿瘤之一,其发病随地域和经济状况不同而异,约80%的病例发生在发展中国家[1, 2]。我国每年约有15万宫颈癌新发病例,其中约8万例死于宫颈癌,其死亡率居妇科肿瘤第二位[3, 4]。近年来,宫颈癌新发病例数逐渐上升,并呈年轻化的趋势。临床研究证实,宫颈癌的发生、发展与高危型HPV感染有关。其中高危型HPV E6/E7基因编码的蛋白质是导致宫颈上皮组织癌变的重要致病因子[5, 6]。高危型HPV E6/E7基因表达,首先要转录为E6/E7 mRNA,再翻译成相应的致癌蛋白质。因此,监测HPV E6/E7 mRNA,对于预防宫颈癌具有重要意义。为了解HPV E6/E7 mRNA检出率及其与宫颈鳞状上皮病变的相关性,本研究分析如下。
对象与方法1. 研究对象: 选择解放军第一〇一医院2015年收治的100例宫颈癌患者作为A组,年龄21~69岁,平均(46.3±9.7)岁。另选取同期100例健康体检非宫颈癌患者为B组,年龄19~75岁,平均(46.7±10.2)岁,其中病理诊断非典型鳞状上皮细胞(ASCUS)60例,低度宫颈鳞状上皮病变(LSIL)17例,高度宫颈鳞状上皮病变(HSIL)23例。入选标准:①入组前均获得患者知情同意;②入组患者均行宫颈液基细胞学检查及其HPV E6/E7 mRNA检查和阴道镜下活检组织病理学检查,HPV E6/E7感染与宫颈癌患者均经组织病理学检查诊断。
2. 标本采集及检测方法:先用无菌棉拭子除去宫颈过多的分泌物,然后用锥形刷置入宫颈口部位轻轻旋转2~3周,获取足量的宫颈脱落细胞,将锥形刷置于盛有4 ml的细胞保存液样品管中,涡旋5 min,使锥形刷上黏附的宫颈细胞聚集于细胞保存液中,得到标本液,送检。HPV E6/E7 mRNA检测采用配套的荧光PCR试剂盒及其试剂。
3. 观察指标:统计病理学检查和荧光PCR检测结果,分析HPV E6/E7 mRNA阳性率,荧光PCR检测敏感度(PCR结果真阳性/病理学检测阳性×100%)、特异度(PCR结果真阴性/病理学检测阴性×100%)、阳性预测值(PCR结果真阳性/PCR结果阳性×100%)和阴性预测值(PCR结果真阴性/PCR结果阴性×100%)。
4. 统计学分析:数据分析采用SPSS 13.3软件,HPV E6/E7 mRNA阳性比较采用 χ2检验,P<0.05为差异有统计学意义。相关性分析采用Spearman分析,P<0.05为有相关性。
结 果1. 临床病理学检验:A组宫颈标本临床病理学检验阳性76例,阴性24例,阳性率为76.0%;B组阳性13例,阴性87例,阳性率为13.0%;A组HPV E6/E7 mRNA阳性率(76.0%)高于B组(13.0%),差异有统计学意义( χ2=24.522,P<0.001),见表1。
2. HPV E6/E7 mRNA检测方法的诊断效率:两组阳性预测值和阴性预测值比较,差异无统计学意义(P>0.05),见表2。
3. HPV E6/E7感染与宫颈鳞状上皮病变的相关性:随入组病例宫颈鳞状上皮病变有无、加重或癌变,其HPV E6/E7感染率逐渐升高,且宫颈癌病例HPV E6/E7感染率(76.0%)高于病理诊断为ASCUS(6.7%)、LSIL(17.6%)和HSIL(26.1%),差异有统计学意义( χ2=18.241,P<0.001; χ2=9.114,P=0.001; χ2=7.615,P=0.001),见表3。
讨 论目前认为高危型HPV感染是发生宫颈癌的前期病变,其中HPV E6/E7 mRNA转录蛋白是导致宫颈正常组织细胞恶性病变的主要因子。因此,加强HPV E6/E7监测,可早期掌握宫颈疾病状况,并尽早采取防治措施,有利于降低妇女宫颈癌发病率。当前对于HPV E6/E7的检测,多采用检测HPV E6/E7 DNA,但由于HPV E6/E7感染人数发展成为宫颈癌者较少,HPV E6/E7 DNA检测难以反映宫颈鳞状上皮病变状况,还可能会增加受检者的负担[7, 8]。因此,本研究选择以医院收治的100例宫颈癌和100例健康体检者为研究对象,检测宫颈标本HPV E6/E7 mRNA,由于mRNA是HPV E6/E7基因转录的产物,可直接反映宿主细胞恶性转化的指标,也是当前国内外最近推荐的检验指标[9, 10]。
研究结果表明,A组(病例组)HPV E6/E7 mRNA阳性率(76.0%)高于对照(B)组13.0%,差异有统计学意义( χ2=24.522,P<0.001),提示宫颈癌病例HPV E6/E7基因转录显著高于非宫颈癌者,从而增加致癌蛋白质表达,提高宫颈宿主细胞恶变分型。研究结果还显示,A组HPV E6/E7 mRNA检测的敏感度为96.1%、特异度为79.2%、阳性预测值为93.5%和阴性预测值为90.5%,B组分别为84.6%、94.3%、68.8%和97.6%,两组HPV E6/E7 mRNA检测的阳性预测值和阴性预测值的差异无统计学意义(P>0.05)。不同病理诊断者HPV E6/E7 mRNA阳性分析表明,随入组病例有无宫颈鳞状上皮病变及加重或癌变,其HPV E6/E7感染率逐渐升高,其中宫颈癌HPV E6/E7感染率(76.0%)明显高于ASCUS(6.7%)、LSIL(17.6%)和HSIL(26.1%)。
综上所述,HPV E6/E7 mRNA是高危HPV E6/E7转化为致癌蛋白质的前体,宫颈癌样本中的HPV E6/E7 mRNA阳性预测值和阴性预测值均较高,且采用HPV E6/E7 mRNA检测方法的效率高,有利于早期诊断及防治宫颈癌。
[1] 周晓花,罗家有,朱琳,等. 长沙市9471名女性公务员人乳头瘤病毒感染状况及亚型分布[J]. 中华流行病学杂志,2013,34(11):1157-1158. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2013.11. 028. Zhou XH,Luo JY,Zhu L,et al. Research of human papillomavirus infection situation and subtype distribution among 9471 female civil servants[J]. Chin J Epidemiol,2013,34(11):1157-1158. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2013. 11.028. |
[2] 姜俊,陈宜刚,王华,等. 人乳头瘤病毒E6/E7 mRNA的检测在宫颈癌筛查中的初步评价[J]. 南京医科大学学报:自然科学,2013,33(9):1261-1264. Jiang J,Chen YG,Wang H,et al. Preliminary evaluation of detection of human papilloma virus E6/E7 mRNA in screening of cervical cancer[J]. Acta Univ Med Nanjing:Nat Sci,2013,33(9):1261-1264. |
[3] Castro SP,Fernández AI,González MJL,et al. Human papillomavirus (HPV)E6/E7 mRNA as a triage test after detection of HPV 16 and HPV 18 DNA[J]. J Med Virol,2013,85(6):1063-1068. DOI:10.1002/jmv.23544. |
[4] Gustinucci D,Giorgi Rossi P,Cesarini E,et al. Use of cytology,E6/E7 mRNA,and p16INK4a-Ki-67 to define the management of human papillomavirus (HPV)-positive women in cervical cancer screening[J]. Am J Clin Pathol,2015,145(1):35-45. DOI:10.1093/ajcp/aqv019. |
[5] 梁凌云,杜辉,张薇,等. 深圳市城乡女性人乳头瘤病毒感染相关因素调查[J]. 中华流行病学杂志,2013,34(8):796-799. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2013.08.010. Liang LY,Du H,Zhang W,et al. Relevant factors to female human papillomavirus infection in city and rural areas of Shenzhen[J]. Chin J Epidemiol,2013,34(8):796-799. DOI:10.3760/cma.j.issn.0254-6450.2013.08.010. |
[6] Liu QL,Lin XX,Lin LY,et al. A comparative study of three different nucleic acid amplification techniques combined with microchip electrophoresis for HPV16 E6/E7 mRNA detection[J]. Analyst,2015,140(19):6736-6741. DOI:10.1039/C5AN00944H. |
[7] Qiu C,Zhi YF,Shen Y,et al. Performance of the HPV-16 L1 methylation assay and HPV E6/E7 mRNA test for the detection of squamous intraepithelial lesions in cervical cytological samples[J]. J Virol Methods,2015,224:35-41. DOI:10.1016/j.jviromet. 2015.08.008. |
[8] Laco J,Sieglová K,Vošmiková H,et al. The presence of high-risk human papillomavirus (HPV)E6/E7 mRNA transcripts in a subset of sinonasal carcinomas is evidence of involvement of HPV in its etiopathogenesis[J]. Virchows Arch,2015,467(4):405-415. DOI:10.1007/s00428-015-1812-x. |
[9] Ndiaye C,Mena M,Alemany L,et al. HPV DNA,E6/E7 mRNA,and p16INK4a detection in head and neck cancers:a systematic review and meta-analysis[J]. Lancet Oncol,2014,15(12):1319-1331. DOI:10.1016/S1470-2045(14)70471-1. |
[10] Wang HY,Lee D,Park S,et al. Diagnostic performance of HPV E6/E7 mRNA and HPV DNA assays for the detection and screening of oncogenic human papillomavirus infection among woman with cervical lesions in China[J]. Asian Pac J Cancer Prev,2015,16(17):7633-7640. DOI:10.7314/APJCP.2015.16. 17.7633. |